السلام عليكم جميعا 
….
اعتذر اليكم زوار مدونتي الكرام عن التغيير  الحاصل حاليا في المدونة بسبب نقل الدومين الى شركة اخرى غير شركة قوقل.
 وتم تثبيت اسم المدونة عن طريق الشركة الجديدة وحصل بعض التغير في الستايلات .. وان شاء الله قريبا تظهر المدونة بشكل افضل 


لذا اعتذر منكم 


ولكن المدونة سوف تظل عاملة حتى يتم تثبيت الشكل الجديد 

التناسل في الإبل

التكاثر في الإبل

• مرحله البلوغ الجنسي :
تصل الذكور والإناث في الثدييات إلى مرحلة البلوغ قبل أن تصل إلى مرحلة النضج الجسمي . بمعنى أن الحيوانات تكون قادرة على إنتاج الخلايا التناسلية ( البويضات و الحيوانات المنوية ) عند سن البلوغ وهو العمر الذي يُسمَح فية للذكر بمزاولة نشاطه الجنسي وللأنثى بان تلقح من قبل الذكر اى الوصول إلى مرحلة النضج الجسمي .

 والبلوغ الجنسي يتأثر بعمر الحيوان والوزن الحي . ولكن لسوء الحظ فالإبل عموما بطيئة النمو وهذا النقص الوراثي بالإضافة نقص التغذية تحت ظروف التربية فئ المناطق الجافة وشبة الجافة يتسببان في تأخير البلوغ الجنسي في الإبل . ولذلك فان الذكور لا تستخدام في التلقيح عادة إلا بعد وصولها إلى عمر 5-6 سنوات وتكون قادرة على تلقيح الإناث حتى وصولها إلى العشرين من عمرها .

• موسم التناسل والشبق :
يعرف هذا الموسم أيضا بأنة موسم النشاط الجنسي وهى الفترة التي يبدأ من خلالها الحيوان الكامل نشاطه الجنسي ويكون قادرا على التزاوج والإخصاب والحمل .

 ونشاط الإبل الجنسي موسمياً وتكون هذه المواسم محدودة تختلف من منطقة لأخرى ومن سلالة إلى أخرى وخلال الموسم تدخل الأنثى في عدد من دورات الشبق المتتالية ، طول الدورة في المتوسط 20- 25 يوما تقريبا وقد تستمر أحيانا حتى 28 يوما وإثناء هذه الفترة تبدى أنثى بعضا من التغيرات الفسيولوجية والسلوكية ، حيث أنها تكون قلقة وتخور باستمرار وترفض العمل وتطلب صحبة الذكر .

 أما الذكور في خلال هذا الموسم تزداد شراستها وترفض العمل ، وكذلك تقل قيمتها وقد ترفض الطعام كليا في بعض الأحيان لأيام متصلة ، كما أنة قد يعانى من الإسهال ، ويلاحظ أيضا تغيرات في بعض مكونات الدم .

نسبة الذكور إلى الإناث :
حتى الآن لم يمكن تحديد العدد المناسب من الإناث التي يخصص ، وفى العادة يخصص ذكر واحد ذو حالة جيدة لكل 50-80 أنثى .والمتوسط للتلقيح المستمر 3 إناث في اليوم الواحد على الأكثر .

التزاوج عند الإبل :
هناك العديد من الاعتقادات السائدة حول هذه العملية ، فالبعض يقول أن الجمل لايلقح الناقة بحضور الإنسان ، والبعض الأخر يذكر أن الجمل ينذوى بناقته بعيدا عن القطيع والإنسان وباقي الحيوانات الأخرى . وآخرون يعتقدون أن عملية التلقيح تتم بوضوح تكون في مؤخرة الجمل مقابلة لمؤخرة الأنثى . إلا أن كل هذه المعتقدات غير صحيحة .

حيث أن حقيقة الأمر أن هذه العملية تتم أولا بان يبحث الذكر عن الإناث التي تكون في حالة شياع أو شبق في تلك الفترة التي تسمح فيها الأنثى للذكر بان يلقحها ، وتسمى في هذه الحالة بفترة القبول عند الأنثى عندما يقوم الذكر الهائج بمحاولة الضغط على رقبة الأنثى لإجبارها على البروك ، وفى هذه الحالة تبرك الأنثى على الأرض ويقف الذكر ويطوقها بحيث تكون القوائم الأمامية للذكر خلف أكتاف الأنثى ، ولهذا السبب يراعى اختيار الفحول ذات القوام الخلفية القوية . وتتراوح المدة التي يقضيها الذكر فوق الأنثى ما بين 15- 20 دقيقة .

الحمل والولادة :
متوسط فترة الحمل في الإناث 370 يوما بعد 12 شهرا من التلقيح ، وبذلك يتوافق موسمي التناسل والولادة مع موسم الأمطار ووفرة الغذاء من المراعى الموسمية الفقيرة . وفى العادة تلد الأنثى مرة واحدة كل عامين ، ولكن بعض الإناث قد تلد بعد 15 شهرا فقط من الولادة السابقة وعند اقتراب موعد الولادة بساعات تتخلف الأنثى عن القطيع فتأخذ مكانا نائيا عنة استعدادا للولادة التي تستغرق مابين 1- 2 ساعة ويصل متوسط وزن المولود إلى حوالي 36 كجم . وفى العادة لاتختلف وزن الذكر عن الأنثى . وتلحق الناقة وحوارها بالقطيع بعد اليوم الثالث . وقد دلت نتائج بعض الدراسات التي أجريت على العديد من النوق إنها تكون قابلة للتلقيح بعد اليوم الثاني من الولادة ومن المؤكد أن النوق يظهر عليها أول شبق بعد الولادة في حدود الثلاث أسابيع الأولى خاصة تحت ظروف التغذية المحسنة .

حليب الإبل :
يعتبر حليب الإبل الغذاء الرئيسي لسكان البادية والصحراء حيث يستهلك طازجا أو رائبا ويمكن الاعتماد على النوق كمصدر جيد لإنتاج اللبن وسد النقص الواضح حاليا في الوطن العربي من نقص إنتاج اللبن وخاصة في الأراضي القاحلة والمناطق الجافة ، إلى جانب ذلك فان حليب الإبل لا يقل جوده عن حليب الأبقار بل قد يتفوق عليه .

إنتـاج لحـوم الإبـل

صفات لحوم الإبل :
لحم الإبل يحتوى على جميع الأحماض الأمينية الأساسية الضرورية للنمو وبالتالي فهو مصدر جيد للبروتين الحيواني عالي القيمة الغذائية ، كما أن دهن الإبل ذو جودة عالية إذا ما توافرت له عليقه جيده ، ودهن الإبل موزع في جميع أجزاء جسمه أما الأغنام خاصة العربية منها فدهونها متجمعة حول المؤخرة ، ونظراً لأن الإبل ليس لها حوصلة صفراوية ( مرارية ) فان هناك احتمال لتوزيع الصفراء بين دهونه وشحومه .

وغلة اللحم في الإبل تعتمد على عمر الحيوان وجنسه وظروف التغذية وصحته العامة ، وتزن الذبيحة من الجمال مابين 300-400 كجم ومن النوق مابين 250-300 كجم .

ولحم الإبل الصغير شهى ولذيذ الطعم بينما لحم الإبل متوسطة العمر يشبه في مذاقه اللحم البقرى الخشن ، والإبل المتقدمة في العمر يكون لحمها عسير المضغ ولا طعم له ولقد ذكر أطباء العرب أن لحم الفصيل من الإبل ألذ اللحوم وأطيبها وأقواها غذاء وهو لمن اعتاده لمنزله لحم الضأن لا يضرهم البتة ولا يولد لهم داء.

ولحوم اللاما والالباكا والفوناق ذات نوعية عالية وتعتبر من السلع الثمينة وإنتاج اللحم من هذه الحيوانات يفوق كثيرا استخدام لبنها فهذا اللحم غنى بالبروتين ويقل فيه الدهن .

أهمية لحوم الأبل :
استخدمت الإبل كمصدر للحم منذ آلاف السنين عند سكان البوادي والحضر ، بل أنه من أحسن ما قدم لأعز الضيوف هو لحم الأبل ، واشتهر العديد من عظماء العرب بالكرم والجود وبفضل ما يذبحونه من هذه الحيوانات دون التفضيل بين الذكور والإناث ولا بين الأعمار الصغيرة أو الأعمار الكبيرة ولم تصنف لحوم الإبل رغم كثرة أستعملها في الولائم .
كما أنه لم تحظ الإبل بدراسات لتطويرها واختيار السلالات الجيدة منها وتصنيفها كحيوانات منتجة للحم أسوه بغيرها من الحيوانات الحقلية الأخرى ، بل لسوء الحظ كان لبعض الدعايات المفرضة بأن استخدام لحوم الإبل يؤدى إلى فقر الدم ويسبب الأمراض الباطنية ، مما أدى إلى تحول مستهلكي لحوم الإبل إلى استهلاك لحوم الأغنام والأبقار الأجنبية كما تأخر الاهتمام بالدراسات الخاصة بتطوير إنتاج لحوم الإبل وقد أدت هذه الشائعات المفرضة إلى تحول سكان منطقة الخليج في سنوات قليلة من استهلاك لحوم الأغنام البلدية إلى استهلاك لحوم الأغنام الأجنبية والتي كانت ترفض في الماضي من قبل سكان هذه المنطقة وقد كان لإمتلاك العالم المتقدم للإمدادات الغذائية والتحكم في أسعارها أثر في فرض نمط استهلاكي معين .
ولازالت لحوم الإبل متحفظة بأهميتها في بعض الدول العربية حيث تعتبر أحد مصادر البروتين الحيواني الهام إذ يمكن الاعتماد عليها في سد قسط هام من الطلب المتزايد على اللحوم .

الإنتاج المكثف للإبل وإنتاج اللحم :
حيث لجأت بعض الدول العربية إلى الإنتاج المكثف في الإبل بإستيراد السلالات العالية الإنتاج والاهتمام بالسلالات المحلية وتطويرها ورفع إنتاجيتها بتوفير الغذاء والرعاية الصحية ولزيادة إنتاج اللحوم باستعمال طريقة تربية وتسمين صغار الإبل والتي تعتمد على التربية المكثفة حيث يجب التركيز على العناصر الآتية :

1- كفاءة استهلاك الأعلاف المركزة لإنتاج اللحوم والألبان للإبل المحلية .
2- تحديد الوزن والعمر الأمثلين لذبح صغار الإبل بالمجازر الحكومية .
3- العمل على زيادة عدد المواليد واختصار الفقرة الفاصلة إلى 15 شهر بإستعمال الفطام المبكر .
4- وضع برنامج زمني لاستنباط سلالات إبل متخصصة في إنتاج اللحم وتتميز بصفات إنتاجية عالية .
5- سرعة توفير رأس المال اللازم لإقامة مشاريع تسمين وتربية الإبل واقامة المجازر الآلية ومصانع تصنيع اللحوم الحديثة .
6- توفير الرعاية البيطرية الكاملة للإبل .

تم نقل السلسله ..لتعم الفائده
جزا الله كاتبها الف خير
تقبلوا..خالص تحياتي

مقال للدكتورة سهيله النوري

sheep toxoplasmosis

The parasite Toxoplasma gondii causes the condition toxoplasmosis. T. gondii infects many mammals, including sheep, but its definitive host is the cat. Within the intestine of a cat, the parasite produces thousands of oocysts, which pass out of the cat in its feces. Ingestion of these oocysts in contaminated water or feed causes infection in sheep.
Infected sheep exhibit no signs of infection. It is, however, a major cause of fetal loss and stillbirths in sheep. Ewes catching a primary infection during pregnancy pass the infection onto the fetus this causes abortion and stillbirths of the lambs.
Developing a toxoplasma infection in early pregnancy causes abortion and resorption of the fetus. The infection in such sheep is only recognized when they prove barren at lambing time. Infection late in pregnancy causes stillbirths and the birth of weak lambs not all infections late in pregnancy will cause this and some healthy lambs are born to infected ewes. A primary Toxoplasma infection mid way through the ewe’s pregnancy leads to fetal death followed by mummification. Eventually the ewe delivers a brown colored mummified fetus and placenta. Sometimes fetal retardation occurs owing to placental dysfunction in addition to fetal infection.
Ewes losing their lambs owing to a toxoplasma infection will not suffer this in second or subsequent pregnancies, as they are immune to the infection.
The drugs Decoquinate (Deccox™) or Monesin sodium (Rumensin™) given with supplementary feeding aids in controlling the infection. In practice, ewes are given the drugs in the last eight weeks of pregnancy as the cost of the supplementary feed required makes their use throughout pregnancy prohibitive.
In farms where no previous cases of toxoplasmosis have been seen, the first indication of a problem is often a series of late abortions. In such cases oral sulphonamide antibiotics given to the rest of the flock can decrease the number of stillborn lambs.
In the UK and the rest of Europe a vaccine, Toxo-Vax, is licensed for the use in sheep. Toxo-Vax™ is a live vaccine containing an incomplete strain of T. gondii called S48. As of August 2009, this vaccine has not been granted licensed for use in the USA.
The prevention of ingestion of the oocysts prevents toxoplasmosis. Kittens are the most common source of such oocysts so maintaining a healthy, neutered, adult population of cats on a farm decreases the incidence of toxoplasmosis.
Reference sources:
Vaccination of sheep with a live incomplete strain (S48) of Toxoplasma gondii and their immunity to challenge when pregnant. D Buxton, K Thomson, S Maley, S Wright and HJ Bos. The Veterinary Record, Vol 129, Issue 5, 89-93
Decoquinate and the control of experimental ovine toxoplasmosis, D. Buxton, S. Wright, S. W. Maley, K. M. Thomson, J. Brebner and K. Millard. The Veterinary Record, Vol 138, Issue 18, 434-436
Livestock Management – Toxoplasmosis in Sheep.   Robert E. Pitts University of Virginia Extension Service.

 

احكام الاضحية من كتاب زاد الستقنع شرح الشيخ محمد العثيمين

أحكام الأضحية من كتاب ( الشرح الممتع على زاد المستقنع ) للشيخ العلامة الفقيه الوالد محمد بن صالح العثيمين رحمه الله

 

إنّ الحمدَ لله ؛ نحمده ، و نستعينه ، و نستغفره . و نعوذ بالله من شرورِ أنفسنا ، و من سيّئاتِ أعمالنا . مَن يهدِهِ اللهُ فلا مُضلّ له ، و مَن يُضلِل فلا هادي له . و أشهدُ أن لا إله إلاّ الله – وحده لا شريكَ له – ، و أشهدُ أنّ محمّدًا عبده و رسوله .
أمّا بعد :
فإن هناك أحكام يجدر بالمسلم أن يعرفها ليكن على علم في عبادته وعلى بينة من أمره وها أناذا أتقدم بتلخيص أحكام الأضحية من كتاب (الشرح الممتع على زاد المستقنع) لشيخنا ووالدنا العلامة الفقيه المحقق المدقق محمد بن صالح العثيمين رحمه الله ورفع منزلته في الدرجات العلى
تعريفها :
والأضحية ما يذبح في أيام النحر تقرباً إلى الله ـ عزّ وجل ـ وسميت بذلك؛ لأنها تذبح ضحى، بعد صلاة العيد.
حكمها
الأضحية سنة، أجمع المسلمون على مشروعيتها، وهي في كل ملة لقول الله تعالى: {وَلِكُلِّ أُمَّةٍ جَعَلْنَا مَنْسَكًا لِيَذْكُرُوا اسْمَ اللَّهِ عَلَى مَا رَزَقَهُمْ مِنْ بَهِيمَةِ الأَنْعَامِ} [الحج: 34] ، فهي مشروعة في جميع الملل، لكن هل هي واجبة أو سنة يكره تركها، أو سنة لا يكره تركها؟
في هذا أقوال للعلماء:
المذهب: أنها سنة، ويكره للقادر أن يدعها.
القول الثاني: أن الأضحية واجبة، وهو مذهب أبي حنيفة، ورواية عن الإمام أحمد ـ رحمهما الله ـ، واختاره شيخ الإسلام ابن تيمية ـ رحمه الله ـ حيث قال: إن الظاهر وجوبها، وأن من قدر عليها فلم يفعل فهو آثم؛ لأن الله ـ سبحانه وتعالى ـ ذكرها مقرونة بالصلاة في قوله: {فَصَلِّ لِرَّبِكَ وَانْحَرْ *} [الكوثر] ، وفي قوله: {قُلْ إِنَّ صَلاَتِي وَنُسُكِي وَمَحْيَايَ وَمَمَاتِي لِلَّهِ رَبِّ الْعَالَمِينَ *} [الأنعام] ، وأبدى فيها وأعاد بذكر أحكامها وفوائدها ومنافعها في سورة الحج، وشيء هذا شأنه ينبغي أن يكون واجباً وأن يلزم به كل من قدر عليه.
وهي من نعمة الله على الإنسان أن يشرع الله له ما يشارك به أهل موسم الحج؛ لأن أهل الموسم لهم الحج والهدي، وأهل الأمصار لهم الأضحية، ولهذا نجد من فضل الله ورحمته أنه جعل لأهل الأمصار نصيباً مما لأهل المناسك، مثل اجتناب الأخذ من الشعر والظفر في أيام العشر؛ من أجل أن يشارك أهل الأمصار أهل الإحرام بالتعبد لله تعالى بترك الأخذ من هذه الأشياء؛ ولأجل أن يشاركوا أهل الحج بالتقرب إلى الله ـ تعالى ـ بذبح الأضاحي؛ لأنه لولا هذه المشروعية لكان ذبحها بدعة، ولنهي الإنسان عنها، ولكن الله شرعها لهذه المصالح العظيمة.
فالقول بالوجوب أظهر من القول بعدم الوجوب، لكن بشرط القدرة، وأما العاجز الذي ليس عنده إلا مؤنة أهله أوالمدين، فإنه لا تلزمه الأضحية، بل إن كان عليه دين ينبغي له أن يبدأ بالدين قبل الأضحية.
مسألة:
هل الأضحية مشروعة عن الأموات أو عن الأحياء؟
الجواب: مشروعة عن الأحياء، إذ لم يرد عن النبي صلّى الله عليه وسلّم ولا عن الصحابة فيما أعلم أنهم ضحوا عن الأموات استقلالاً، فإن رسول الله صلّى الله عليه وسلّم مات له أولاد من بنين أو بنات في حياته، ومات له زوجات وأقارب يحبهم، ولم يضح عن واحد منهم، فلم يضح عن عمه حمزة ولا عن زوجته خديجة، ولا عن زوجته زينب بنت خزيمة، ولا عن بناته الثلاث، ولا عن أولاده ـ رضي الله عنهم ـ، ولو كان هذا من الأمور المشروعة لبيَّنه الرسول صلّى الله عليه وسلّم في سنته قولاً أو فعلاً، وإنما يضحي الإنسان عنه وعن أهل بيته.
وأما إدخال الميت تبعاً فهذا قد يستدل له بأن النبي صلّى الله عليه وسلّم «ضحى عنه وعن أهل بيته» ، وأهل بيته يشمل زوجاته اللاتي مِتْنَ واللاتي على قيد الحياة، وكذلك ضحى عن أمته، وفيهم من هو ميت، وفيهم من لم يوجد، لكن الأضحية عليهم استقلالاً لا أعلم لذلك أصلاً في السنة.
ولهذا قال بعض العلماء: إن الأضحية عنهم استقلالاً بدعةينهى عنها، ولكن القول بالبدعة قول صعب؛ لأن أدنى ما نقول فيها: إنها من جنس الصدقة، وقد ثبت جواز الصدقة عن الميت، وإن كانت الأضحية في الواقع لا يراد بها مجرد الصدقة بلحمها، أو الانتفاع به لقول الله تعالى: {لَنْ يَنَالَ اللَّهَ لُحُومُهَا وَلاَ دِمَاؤُهَا} [الحج: 37] ، ولكن أهم شيء فيها هو التقرب إلى الله بالذبح.
شروط الأضحية:
الأضحية لا بد فيها من شروط وهي:
الأول: أن تكون من بهيمة الأنعام، وهي الإبل والبقر والغنم؛ لقول الله تعالى: {عَلَى مَا رَزَقَهُمْ مِنْ بَهِيمَةِ الأَنْعَامِ} [الحج: 28] ، فلو ضحى الإنسان بحيوان آخر أغلى منها لم يجزه، لو ضحى بفرس تساوي عشرة آلاف ريال عن شاة تساوي ثلاثمائة ريال لم يجزه.
مسألة
أيهما أفضل؟ الإبل أو البقر أو الغنم؟
قال المؤلف: «أفضلها إبل، ثم بقر، ثم غنم» ، ومراده إن أخرج بعيراً كاملاً فهو أفضل من الشاة، وأما لو أخرج بعيراً عن سبع شياه، فسبع الشياه أفضل من البعير، وعللوا ذلك بأنها أكثر نفعاً، إلا في العقيقة فالشاة أفضل من البعير الكامل؛ لأنها التي وردت بها السنة فتكون أفضل من الإبل.
الشرط الثاني من شروط الأضحية أن تكون قد بلغت السن المعتبرة شرعاً، فإن كانت دونه لم تجزئ، لقول النبي صلّى الله عليه وسلّم: «لا تذبحوا إلا مسنة إلا أن تعسر عليكم فتذبحوا جذعة من الضأن» ، وخص الضأن دون المعز لأنه أطيب لحماً، فقوله: «لا تذبحوا إلا مسنة» أي ثنية «إلا إن تعسر عليكم فتذبحوا جذعة من الضأن» ، فإن كان دون ذلك فإنها لا تجزئ، ولهذا لما قال أبو بردة بن نيار ـ رضي الله عنه ـ: يا رسول الله إن عندي عناقاً هي أحب إلي من شاتين أفتجزئ عني؟ قال: «نعم ولن تجزئ عن أحد بعدك» ، والعناق الصغيرة من المعز التي لها أربعة أشهر، وهذا يدل على أنه لا بد من بلوغ السن المعتبر شرعاً، واشتراط أن تكون من بهيمة الأنعام، وأن تبلغ السن المعتبر شرعاً يدلنا على أنه ليس المقصود من الأضحية مجرد اللحم، وإلا لأجزأت بالصغير والكبير.
ـ فالسن المعتبر لإجزاء الإبل خمس سنين، فما دون الخمس لا يجزئ أضحية ولا هدياً عند الإطلاق؛ لأن الإبل لا تثني إلا إذا تم لها خمس سنين.
والبقر سنتان، والمعز سنة فلا يجزئ ما دون ذلك ، والضأن نصفها ، أي: نصف سنة أي :ستة أشهر هلالية ولا عبرة بالأشهر غير الهلالية؛ لأن الله يقول: {يَسْأَلُونَكَ عَنِ الأَهِلَّةِ قُلْ هِيَ مَوَاقِيتُ لِلنَّاسِ وَالْحَجِّ} [البقرة: 189] »
تنبيهات وفوائد
1/ فلو قال قائل: لو أثنت البعير قبل الخمس والبقرة قبل السنتين، فهل نعتبر الثنية بكونها أثنت أو نعتبر بالسنين؟ نقول هذا شيء نادر، والنادر لا حكم له، وظاهر كلام العلماء ـ رحمهم الله ـ أن العبرة بالسنوات وأن ما تم لها خمس سنين من الإبل فهي ثنية، أو سنتان من البقر فهي ثنية، أو سنة من المعز فهي ثنية، سواء أثنت الثنية أو لا.
2/ فلو سألك سائل هل يجزئ من الغنم ما له ثمانية أشهر؟
الجواب: فيه تفصيل، إن كان من الضأن فنعم، وإن كان من المعز فلا؛ لأنه لا بد أن تكون ثنية.
وذكر بعض العلماء أن من علامات إجزاء الضأن أن ينام الشعر على الظهر؛ لأن الخروف الصغير يكون شعره واقفاً، فإذا بدأ ينام فهذا علامة على أنه صار جذعاً، ولكن هذه ليست علامة مؤكدة، بمعنى أننا نعتبرها هي بل نعتبر التاريخ، فإذا قال: ولد هذا الخروف أول يوم من محرم فإنه يتم ستة أشهر آخر جمادى الثانية.
3/ فإذا قال قائل: هل يكتفى بقول البائع، أو لا بد أن يقول المشتري للبائع ائت بشهود؟
الجواب: فيه تفصيل: إن كان البائع ثقة فإن قوله مقبول؛ لأن هذا خبر ديني، كالخبر بدخول وقت الصلاة، أو بغروبالشمس في الفطر وما أشبه ذلك، فيقبل فيه خبر الواحد، وإن كان غير ثقة يقول: أقسم بالله أن لها سنة وشهراً يعني المعز، وأتى بالشهر للدلالة على الضبط، وليكون أقرب للتصديق، فإنه لا يصدق لا سيما إذا وجدت قرينة تدل على كذبه كصغر البهيمة.
وإذا كان الإنسان نفسه يعرف السن بالاطلاع على أسنانها، أو ما أشبه ذلك فإنه كافٍ.
الشرط الثالث: السلامة من العيوب المانعة من الإجزاء، وسيأتي بيانها.
الشرط الرابع: أن تكون في وقت الذبح، وسيأتي بيان ذلك.
جنس الأضحية
ـ تجزئ الشاة عن واحد ، أي: يضحي الإنسان بالشاة عن نفسه، وتجزئ من حيث الثواب عنه وعن أهل بيته أيضاً؛ لأن الرسول صلّى الله عليه وسلّم كان «يضحي بالشاة الواحدة عنه وعن أهل بيته»
والبدنة والبقرة عن سبعة ممن يضحون، والدليل حديث جابر بن عبد الله ـ رضي الله عنه ـ قال: «نحرنا في عام الحديبية البدنة عن سبعة والبقرة عن سبعة»
مسألة :
قوله: «عن سبعة» أي: سبعة رجال، فإذا كان الإنسان يضحي بالواحدة عنه وأهل بيته، فإنه بالسُّبْع يضحي عنه وعن أهل بيته؛ لأن هذا تشريك في الثواب، والتشريك في الثواب لا حصر له، فها هو النبي صلّى الله عليه وسلّم ضحى عن كل أمته، وها هو الرجل يضحي بالشاة الواحدة عنه وعن أهل بيته، ولو كانوا مائة، أما التشريك في الملك فلا يزيد على سبعة، فلو اشترك ثمانية في بعير قلنا: لا يجوز، فلا بد أن يخرج واحد منكم، فإن رضي واحد منهم أن يخرج فهذا هو المطلوب، وإلا فالأخير هو الخارج، فإن لم يعلم الأخير فالقرعة، لكن لو ذبحوها فبانوا ثمانية فماذا يصنعون؟ قيل: يذبحون شاة واحدة لتكمل للثامن، ويحتمل أن يقال: يقترعون فمن خرج بالقرعة خرج وذبح شاة وحده.
فالبدنة والبقرة هل تجزئان عن سبعة رجال، أو تجزئان عن سبع شياه؟
الجواب: الثاني، فإذا قلنا بالثاني قلنا: إذا كانت الشاة تجزئ عن الرجل وعن أهل بيته في الثواب، فكذلك يجزئ سبع البدنة وسبع البقرة عنه وعن أهل بيته.
ــ قد ذكر الشيخ رحمه الله أن من شروط الأضحية أن تكون السلامة من العيوب المانعة من الإجزاء ومعلوم أن رفع الإجزاء عن البهيمة يحتاج إلى دليل؛ لأن البهيمة إذا توفرت فيها أوصاف القبول فإننا لا نرفع حكم هذه الأوصاف وهو القبول إلا بوجود مانع من الشرع صحيح , وهذه قاعدة قد نص عليها الشيخ ونبه إليها
ثم قال : وقوله: «العوراء والعجفاء والعرجاء والمريضة»، هذه الأربع نص عليها النبي صلّى الله عليه وسلّم: «فقد سئل ماذا يتقى من الضحايا؟ قال: أربع وأشار بأصابعه العوراء» ، لكن النبي صلّى الله عليه وسلّم قيدها بأنها بينة العور فقال: «العوراء البين عورها» وهذا الأول ، وهي التي تكون عينها ناتئة أو غائرة.
مسألة :
هل هناك عوراء غير بيِّن عورها؟
الجواب: نعم، فلو فرضنا أنها لا تبصر بعينها، ولكن إذا نظرت إلى العين ظننتها سليمة، فهذه عوراء ولم يتبين عورها، فتجزئ، ولكن السلامة من هذا العور أولى، والحكمة من ذلك تشويه المنظر من وجه، وقلة الغذاء من وجه آخر، فتشويه المنظر ظاهر، وقلة الغذاء؛ لأنها لا تنظر إلا من جانب واحد، فيقل استيعابها للغذاء، فربما ترعى جانب الشجرة ولا ترعى الجانب الآخر. ويقاس عليها العمياء من باب أولى؛ لأنه إذا كان فقد العين الواحدة مانعاً ففقد العينين من باب أولى.
وقال بعض العلماء أهل الاستحسان بالعقول: إن العمياء تجزئ وإن كانت العوراء لا تجزئ؛ لأن العوراء إنما منع منها لكون رؤيتها ناقصة، ترعى من جانب واحد، أما العمياء فإن صاحبها سيأتي لها بالعلف فلا يلحقها نقص، فتكون كالبصيرة.
وهذا قياس غريب.
فيقال: هل هذه العمياء معيبة أو غير معيبة؟
الجواب: معيبة بعيب أقبح من العور، وهذا من باب قياس الأولى،فالصواب أن العمياء لا تجزئ.وهذا الثاني
العجفاء: وهي الهزيلة التي لا مخ فيها، فالمخ مع الهزال يزول، ويبقى داخل العظم أحمر، فهذه لا تجزئ؛ لأنها ضعيفة البنية كريهة المنظر، والهزيلة التي فيها مخ أي: لم يصل الهُزال إلى داخل العظم تجزئ؛ لأن الرسول صلّى الله عليه وسلّم قال: «والعجفاء التي لا تنقي» ، قال العلماء: معنى «لا تنقي» أي ليس فيها نقيءُ، والنِقْي المخ، يقول أهل الخبرة: إنه إذا جاء الربيع بسرعة وكانت الغنم هِزالاً ورعت من الربيع فإنها تبني شحماً قبل أن يتكون فيها المخ، فهذه التي بنى الشحم عليها دون أن يكون لها مخ تجزئ، لأن النبي صلّى الله عليه وسلّم قال: «العجفاء التي لا تنقي» ، وهذه الآن ليست عجفاء، بل هي سمينة، لكن لم يدخل السمن داخل العظم حتى يتكون المخ، فنقول: إن النبي صلّى الله عليه وسلّم وصفها بوصفين: عجفاء، وليس فيها مخ، وهذه ليست بعجفاء فتجزئ.
العرجاء ، المراد البين عرجها لقول النبي صلّى الله عليه وسلّم: «والعرجاء البين ضلعها»
وهي التي لا تطيق المشي مع الصحيحة، فهذه عرجها بين، أما إذا كانت تعرج لكنها تمشي مع الصحيحة، فهذه ليس عرجها بيناً، لكن كلما كملت كانت أحسن.
والحكمة من ذلك أن البهيمة إذا كانت على هذه الصفة فإنها قد تتخلف عن البهائم في المرعى ولا تأكل ما يكفيها، ويلزم من ذلك أن تكون هزيلة في الغالب.
مسألة:
مقطوعة إحدى القوائم لا تجزئ من باب أولى، والزمنى التي لا تستطيع المشي إطلاقاً لا تجزئ، ولكن يقال: فيها ما يقال في العمياء، فالذين قالوا بإجزاء العمياء يقولون بإجزاء الزمنى؛ لأن الزمنى يؤتى لها بعلفها، ولكن هذا قول ضعيف، وخلاف القياس الصحيح؛ لأن الرسول صلّى الله عليه وسلّم ينبه بالأدنى على ما هو أعلى منه، فإذا كانت العرجاء لا تجزئ ـ إذا كان عرجها بيناً، فمقطوعة إحدى اليدين أو الرجلين أو الزمنى التي لا تمشي إطلاقاً من باب أولى، أما كون العرج اليسير تجزئ معه الأضحية؛ فلأن هذا لا يسلم منه شيء غالباً فسمح فيه.
المريضة :لا تجزئ، ولكن هذا الإطلاق مقيد بما إذا كان المرض بيناً، وبيان المرض إما بآثاره، وإما بحاله.
أما آثاره فأن تظهر على البهيمة آثار المرض من الخمول والتعب السريع، وقلة شهوة الأكل، وما أشبه ذلك.
وأما الحال فأن يكون المرض من الأمراض البينة كالطاعون وشبهه، وإن كانت نشيطة، فإنها لا تجزئ، ولهذا قال علماء الحنابلة: إن الجرب مرض، مع أن الجرب لا يؤثر تأثيراً بيناً على البهيمة ولا سيما إذا كان يسيراً، لكنهم قالوا: إنه مرض بين، ثم إنه مفسد للحم فلا تجزئ.
وعدم إجزاء المريضة للنص والمعنى:
فالنص قول الرسول صلّى الله عليه وسلّم: «المريضة البين مرضها» .
والمعنى لأن لحم المريضة يخشى على الإنسان من أكله أن يتأثر به.
ــ وأما المبشومة، وذلك أن بعض الغنم إذا أكل التمر انبشم، أي: انتفخ بطنه، ولم تخرج منه الريح، ولا يُعلم أنه سَلِمَ من الموت إلا إذا ثلط، أي: إذا تبرز، ولهذا نقول: المبشومة مرضها بيِّن ما لم تثلط.
ــ المغمى عليها: بأن سقطت من أعلى فأغمي عليها فما دامت في إغمائها فإنها لا تجزئ؛ لأن مرضها بيِّن
ــ مقطوع الألية: فإنه لا يُجزئ؛ لأن الألية ذات قيمة ومرادة مقصودة، وعلى هذا فالضأن إذا قطعت أليته لا يجزئ والمعز إذا قطع ذنبه يجزئ.
ولكن هنا إشكال وهو أن بعض أهل الخبرة يقولون: إن قطع الألية من مصلحة البهيمة؛ لأن الشحم الذي يتكدس في الألية إذا لم يكن لها ألية عاد إلى الظهر وانتفعت به البهيمة مع خفة البهيمة، وعدم تعرضها للتعب؛ لأن بعض الضأن تكبر أليتها جداً فيؤثر على رجليها من ثقل هذا الشحم، ولكن ظاهر كلام الفقهاء أنها لا تجزئ مطلقاً ـ أعني مقطوعة الألية .
العيوب المجزئة في الأضحية وإن كان أولى طلب الأفضل وهي مما رجحها الشيخ في الباب
1ــ الهتماء هي التي سقطت ثناياها من أصلها، فإن انكسرت مع بقاء الأصل فإنها تجزئ؛ وذلك لأنها إذا ذهبت ثناياها من أصلها تشوهت خلقتها من وجه، وصارت غير مستطيعة لخرط الورق من الشجر؛ لأنها ليس لها ثنايا، فلا تكاد تأخذ حظها من الرعي، وقال شيخ الإسلام ـ رحمه الله ـ: الهتماء هي التي سقط بعض أسنانها ولم يقيد ذلك بالثنايا وما ذهب إليه المؤلف في الهتماء قول مرجوح.
والصواب أنها تجزئ، ولكن كلما كانت أكمل كانت أفضل؛ ووجه إجزائها أن النبي صلّى الله عليه وسلّم سئل ماذا يتقى من الضحايا، فقال: «أربع وأشار بيده» ، وليست الهتماء من الأربع، ولا بمعنى واحدة منها.
2ــ الجداء لا تجزئ أيضاً ( على قول المصنف رحمه الله ) ، والجداء هي التي نشف ضرعها، أي: مع الكبر صار لا يدر، فضرعها ناشف، حتى وإن كان الضرع باقياً بحجمه لم يضمر فإنها لا تجزئ، ولكن هذا القول مرجوح أيضاً؛ لأنه لا دليل على منع التضحية بها، وإذا لم يكن على ذلك دليل فالأصل الإجزاء، ولهذا كان القول الراجح في هذه المسألة أنها تجزئ.
3ــ العضباء هي التي ذهب أكثر أذنها أو قرنها طولاً أو عرضاً فإنها لا تجزئ ؛ لأن النبي صلّى الله عليه وسلّم «نهى عن أعضب الأذن والقرن» ، والنهي يقتضي الفساد وعدم الإجزاء، فإذا ضحى بعضباء الأذن أو القرن فإنها لا تجزئ.
وقال بعض العلماء: إنها تجزئ لكنها مكروهة، وهذا القول هو الصحيح؛ لأن في صحة الحديث نظراً، والأصل عدم المنع حتى يقوم دليل على ذلك، إلا أنها تكره؛ لأن النبي صلّى الله عليه وسلّم: «أمر أن نستشرف العين والأذن، وألا نضحي بالمقابَلة، ولا المدابَرة، ولا الخرقاء»
4ــ الجماء هي التي لم يخلق لها قرن، فتجزئ.
وأيهما أفضل ذات القرن أو الجماء؟
الجواب: ذات القرن، ولهذا جاء في الحديث: «بأن من تقدم إلى الجمعة كأنما قرب كبشاً أقرن» ، ولولا أن وصف القرن مطلوب لما وصف الكبش بأنه أقرن.
5ــ خصي غير مجبوب: الخصي ما قطعت خصيتاه، فيجزئ مع أنه ناقص الخلقة، وحينئذ يطلب الفرق بين الخصي وبين مقطوع الأذن، فإن مقطوع الأذن كما سبق لا يجزئ، فلماذا أجزأ الخصي مع أن الخصيتين فيهما منافع كثيرة، وهو الإنجاب والفحولة في البهيمة، ولهذا تجد الفرق بين الفحل والخصي، قالوا: لأن ذهاب الخصيتين من مصلحة البهيمة؛ لأنه أطيب للحم، وقد ثبت عن النبي صلّى الله عليه وسلّم: «أنه ضحى بكبشين موجوءين» ، أي مقطوعي الخصيتين.
فإن قطع الذكر مع الخصيتين؟ فقد قال المؤلف ـ رحمه الله ـ: «خصي غير مجبوب» ، أي: غير مقطوع الذكر، وذلك أن قطع الذكر لا يفيد في زيادة اللحم وطيبه، وهو قطع عضو فيشبه قطع الأذن.
والخصي بواحدة يجزئ من باب أولى، وعلى هذا فما قطعت خصية واحدة منه أجزأ وخصيتان أجزأ، ومع الذكر لا يجزئ؛ لأنه قال: «خصي غير مجبوب» .
فإذا قال قائل: هل يمكن أن تحيا البهيمة مع الخصاء؟
فالجواب: نعم يمكن، وهذا كثير، لكن بشرط أن يكون المباشر لذلك من أهل الخبرة؛ لأنه قد يباشر الخصاء من ليس من أهل الخبرة فتهلك البهيمة، ـ وسبحان الله ـ هذا الأمر موجود من قبل أن تظهر وسائل الراحة الحديثة كالبنج وشبهه، لكن عرف بالتجارب، أما الآن فالأمر أسهل يمكن أن تخصى البهيمة بدون أن تشعر بألم إطلاقاً.
6ــ ما بأذنه، أو قرنه قطع أقل من النصف فإنه يجزئ لكن مع الكراهة؛ لأن النبي صلّى الله عليه وسلّم: «أمرنا أن نستشرف العين والأذن، وألا نضحي بمقابَلة، أو مدابَرة، أو شرقاء، أو خرقاء» .
وقوله صلّى الله عليه وسلّم: «نستشرف العين والأذن» ، أي: أن تكون شريفة ليس فيها عيب أو نشرف عليها والمعنى الأول أصح.
وهذا مستثنى من قوله فيما سبق «والعضباء» ، فالعضب إذا كان أقل من النصف فلا يضر.
وعلى كل حال ينبغي أن نقسم العيوب إلى ثلاثة أقسام:
الأول: ما دلت السنة على عدم إجزائه، وهي أربع: العوراء البين عورها، والمريضة البين مرضها، والعرجاء البين ضَلَعها، والعجفاء التي لا تنقي، فهذه منصوص على عدم إجزائها، ويقاس عليها ما كان مثلها أو أولى منها، أما ما كان مثلها فإنه يقاس عليها قياس مساواة، وأما ما كان أولى منها فيقاس عليها قياس أولوية.
الثاني: ما ورد النهي عنه دون عدم الإجزاء، وهو ما في أذنه أو قرنه عيب من خرق، أو شق طولاً أو شق عرضاً، أو قطع يسير دون النصف، فهذه ورد النهي عنها في حديث علي بن أبي طالب ـ رضي الله عنه ـ، ولكن هذا النهي يحمل على الكراهة؛ لوجود الحديث الحاصر لعدم المجزئ بأربعة أصناف.
الثالث: عيوب لم يرد النهي عنها، ولكنها تنافي كمال السلامة، فهذه لا أثر لها، ولا تكره التضحية بها ولا تحرم، وإن كانت قد تعد عند الناس عيباً، مثل العوراء التي عورها غير بيِّن، ومثل مكسورة السن في غير الثنايا وما أشبه ذلك، ومثل العرجاء عرجاً يسيراً، فهذه عيوب لكنها لا تمنع الإجزاء، ولا توجب الكراهة لعدم وجود الدليل، والأصل البراءة.

زيت الزيتون

بسم الله الرحمن الرحيم

فوائد زيت الزيتون للصحة……

أقسم الله تعالى في قرآنه العظيم بالزيتون فقال : (والتين والزيتون . وطور سينين ) .
وأوصى رسول الله صلى الله عليه وسلم باستعمال زيت الزيتون فقال : ” كلوا الزيت وادهنوا به فإنه من شجرة مباركة ” .

دهش الباحثون حديثا حينما اكتشفوا أن سكان جزيرة كريت في البحر المتوسط هم أقل الناس إصابة بأمراض القلب والسرطان في العالم أجمع . ودهشوا أكثر حينما عرفوا أن أهالي جزيرة كريت يستهلكون زيت الزيتون أكثر من أي شعب آخر ، فحوالي 33 % من السعرات الحرارية التي يتناولونها يوميا تأتي من زيت الزيتون .فما علاقة زيت الزيتون بذلك ؟ وهل للطب الحديث رأي في هذه العلاقة ؟ وما تأثيراته على القلب والكولسترول ؟

ماذا يقول أطباء الغرب عن زيت الزيتون ؟
يقول الدكتور ” ويليام كاستللي ” مدير دراسة فارمنجهام الشهيرة :
” إن هناك زيتا واحدا يتمتع بأطول سجل من سلامة الاستعمال في التاريخ هو زيت الزيتون . فلقد تناول زيت الزيتون أجيال وأجيال ، وامتاز هؤلاء بصحة الأبدان وندرة جلطة القلب عندهم . وهذا السجل الحافل بمآثر زيت الزيتون يجعلنا نطمئن لاستعماله ، ونقبل عليه بشغف كبير ” .
ويقول الدكتور ” أهرنس ” من جامعة كوفلر بنيويورك : ”
إننا ندرك تماما أن استعمال سكان حوض البحر المتوسط لزيت الزيتون كمصدر أساسي للدهون في الغذاء هو السبب وراء ندرة مرض شرايين القلب التاجية عندهم ” .

وينبه الدكتور كاستللي إلى فوائد استعمال زيت الزيتون في حوض البحر المتوسط فيقول :
” رغم أن الناس في حوض البحر المتوسط يتناولون بعض الدهون المشبعة ( السيئة ) المتوافرة في لحم الخروف والقشدة والسمن والجبن ، إلا أنهم يستعملون زيت الزيتون بشكل رئيسي في طهي الطعام . وهذا ما يجعل أمراض شرايين القلب التاجية قليلة الحدوث عندهم ” . ويقول أيضا : ” إن أفضل طريقة لطهي الطعام وتحضير المأكولات هي باستعمال زيت الزيتون بشكل أساسي ، واستعمال كميات قليلة من زيت الذرة أو دوار القمر دوار الشمس . فالجسم لا يحتاج إلا إلى كميات قليلة من النوعين الأخيرين ” . ويمتاز زيت الزيتون بغناه بالدهون اللامشبعة .

أما الدكتور تريفيسان من جامعة نيويورك فقد لخص فوائد زيت الزيتون في بحث نشر في مجلة ( جاما ) عام 1990 فقال:
: ” لقد أكدت الدراسات الحديثة التأثيرات المفيدة لزيت الزيتون في أمراض شرايين القلب ، ورغم أن البحث قد تركز أساسا على دهون الدم ، إلا أن عددا من الدراسات العلمية قد أشارت إلى فوائد زيت الزيتون عند مرضى السكري والمصابين بارتفاع ضغط الدم ” .

الأبحاث العلمية الحديثة :
حتى عام 1986 كانت الكتب الطبية تقول بأن زيت الزيتون لا يؤثر على كولسترول الدم ، فلا يزيده ولا ينقصه . ولكن الأبحاث العلمية الحديثة جدا قد أظهرت أن زيت الزيتون ينقص مستوى كولسترول الدم . وليس هذا فحسب بل إنه لا ينقص من مستوى الكولسترول المفيد في الدم . ومن الثابت علميا أنه كلما ارتفع مستوى هذا النوع من الكولسترول ، قلت نسبة الإصابة بجلطة القلب .

وقد أظهرت دراسة نشرت عام 1990 في مجلة جاما الأمريكية الشهيرة أن مستوى ضغط الدم ، وسكر الدم ، والكولسترول كان أقل عند الذين كانوا يكثرون من تناول زيت الزيتون . وقد أجريت تلك الدراسة على أكثر من مئة ألف شخص .

زيت الزيتون وارتفاع ضغط الدم :
أجرى الدكتور ” ويليامز ” من جامعة ستانفورد الأمريكية دراسة على 76 شخصا غير مصاب بأية أمراض قلبية لمعرفة تأثير زيت الزيتون على ضغط الدم . فوجد الباحثون أن ضغط الدم قد انخفض بشكل واضح عند الذين تناولوا زيت الزيتون في غذائهم اليومي . وكان انخفاض ضغط الدم أشد وضوحا عند الذين تناولوا 40 جراما من زيت الزيتون يوميا .

زيت الزيتون ومرض السكر :
ينجم مرض السكر عن نقص أو غياب في إفراز الأنسولين من البنكرياس ، مما يؤدي إلى زيادة مستوى السكر في الدم وقد أوصى الاتحاد الأمريكي لمرضى السكر ، المصابين بمرض السكر بتناول حمية تعطى فيه الدهون بنسبة 30 % من الحريرات على ألا تتجاوز نسبة الدهون المشبعة ( كالدهون الحيوانية ) عن 10 % . وأن تكون باقي الدهون على شكل زيت زيتون وزيت ذرة ، أو زيت دوار الشمس .

فوائد أخرى لزيت الزيتون :
ذكرت دائرة المعارف الصيدلانية الشهيرة ” مارتندل ” أن زيت الزيتون مادة ذات فعل ملين لطيف ، ويعمل كمضاد للإمساك . كما أن زيت الزيتون يلطف السطوح الملتهبة في الجلد ، ويستعمل في تطرية القشور الجلدية الناجمة عن الأكزيما وداء الصدف .
ألم يقل رسول الله صلى الله عليه وسلم : ” ائتدموا بالزيت ..وادهنوا به ” صحيح الجامع الصغير 18
وقد وصف الله تعالى هذه الشجرة بأنها مباركة ، فقال : ( يوقد من شجرة مباركة زيتونة لا شرقية ولا غربية ) النور : 35
فالشجرة مباركة .. والزيت مبارك .. وهنيئا لمن نال من تلك البركات ….

مقطع الفيديو التالي يبين فوائد زيت الزيتون

type os snake venum

Types of Snake Venom, Symptoms and Treatment

September 21, 2010 by  

Filed under brown sheep

Leave a Comment

WARNING

ALL THE INFORMATION ON SNAKE-BITE TREATMENT IS THERE TO HELP YOU

UNDERSTAND HOW TO MANAGE THESE EMERGENCIES. I HOLD NO

RESPONSIBILITY WHATSOEVER FOR ANY LOSSES OR HARM DONE.

Cytotoxic venom (cell destroying)

Symptoms:

This venom destroys blood vessels, cells and tissue.

The symptoms develop slowly, 10 – 15 minutes after the bite.

The bite is very localized and painful, with severe swelling, bleeding, redness and

blistering often occurring.

Nausea and vomiting may also occur.

Once the venom enters the body, the body sends plasma (white blood cells) to the

site of the bite to try and dilute the venom. With the venom being so potent, excess

amounts of plasma cause the body tissues to swell up to the degree where the veins

are compressed very tightly up against the skin, resulting in loss of blood circulation.

The area that swells often turns to a blackish-blue color as a result of there being

limited blood circulation. If not treated promptly, within 4 hours, amputations may

necessary.

Treatment:

Keep casualty calm and advise not to move. Either sitting or lying down.

Cover the site of the bite with a clean dressing and apply a pressure bandage from

the start of the limb, then wrapping towards the bite area.

It is very important to take the pressure bandage off every 10 – 15 minutes then re-

applying it once again as severe swelling may cause circulation to be cut off by the

bandage.

Splint and elevate the limb if possible.

If a suction syringe is available, then use on the site of the bite within three minutes,

any time after that would be prove useless. Don’t use your mouth to suck the venom

out as you may have a cut or mouth ulcer where the venom can enter through.

Don’t cut the sight of the bite as this may lead to infection of the wound.

Keep the airways open and monitor respiration and heart rate.

Try to identify the snake if possible but don’t waste time doing this. Don’t try catching

the snake if it is still alive as this may result in another snake-bite.

Transport casualty to hospital promptly.

Haemotoxic venom (poisoning of blood)

Symptoms:

Often no pain or symptoms occur for 1 -3 hours and as long as 8 hours.

Casualty feels lethargic with headaches.

Nausea and vomiting may occur.

Constant bleeding from the bite wound.

Bruising as well as blood spots may occur under the skin.

Blood oozing from other bodily openings.

This venom affects the blood clotting mechanism, resulting in headaches, and loss of

blood through the bodily openings and if left untreated internal bleeding of the organs

will occur.

Treatment:

Keep casualty calm and advise not to move. Either sitting or lying down.

Cover the site of the bite with a clean dressing and apply a pressure bandage from

the start of the limb, then wrapping towards the bite area.

Splint and elevate the limb if possible.

If a suction syringe is available, then use on the site of the bite within three minutes,

any time after that would be prove useless. Don’t use your mouth to suck the venom

out as you may have a cut or mouth ulcer where the venom can enter through.

Don’t cut the sight of the bite as this may lead to infection of the wound.

Keep the airways open and monitor respiration and heart rate.

Try to identify the snake if possible but don’t waste time doing this. Don’t try catching

the snake if it is still alive as this may result in another snake-bite.

Transport casualty to hospital promptly.

Myotoxic venom (muscular necrosis)

Symptoms:

Casualty feels a sensation of the tongue thickening.

Dryness of the throat with a sense of thirst.

Stiffness of the jaw, neck, trunk and limbs muscles.

Severe pain when moving muscles. 

Muscular spasms and convulsions.

Eyelids may start drooping.

Difficulty breathing.

Urine turns to a blackish-brown color after a few hours.

Myotoxic venom contains peptides that destroy the protein in the muscle fibers, that

have a high oxidative capacity, resulting in myocrosis (muscle destruction).

The broken down protein from the muscle fibers then enters the blood stream through

to the kidneys. The kidneys overwork trying to filter out all the excess body tissue

often resulting in kidney failure and the urine turning very dark in color.

Treatment:

Keep casualty calm and advise not to move. Either sitting or lying down.

Cover the site of the bite with a clean dressing and apply a pressure bandage from

the start of the limb then wrapping towards the bite area.

Splint and elevate the limb if possible.

If a suction syringe is available, then use on the site of the bite within three minutes,

any time after that would be prove useless. Don’t use your mouth to suck the venom

out as you may have a cut or mouth ulcer where the venom can enter through.

Don’t cut the sight of the bite as this may lead to infection of the wound.

Keep the airways open and monitor respiration and heart rate.

Try to identify the snake if possible but don’t waste time doing this. Don’t try catching

the snake if it is still alive as this may result in another snake-bite.

Transport casualty to hospital promptly.

With certain species of snakes such as sea snakes the venom is extremely

powerful, so a tourniquet may be used but should be released and put back on every

10 – 15 minutes to allow for blood circulation. 

Neurotoxic venom (Nerve destroying)

Symptoms:

The casualty has speech and swallowing difficulties often accompanied by drooling.

Difficulty breathing.

Respiratory arrest.

Dizziness.

Tunnel vision or blurred vision.

Visible increase in sweating.

Convulsions.

Unconsciousness.

This venom attacks the central nervous system by causing a high loss of the

synaptic vesicles, resulting in the blockage of nerve impulses from the brain too the

muscles.

Treatment:

Keep casualty calm and advise not to move. Either sitting or lying down.

Cover the site of the bite with a clean dressing and apply a pressure bandage from

the start of the limb then wrapping towards the bite area.

Splint and elevate the limb if possible.

If a suction syringe is available, then use on the site of the bite within three minutes,

any time after that would be prove useless. Don’t use your mouth to suck the venom

out as you may have a cut or mouth ulcer where the venom can enter through.

Don’t cut the sight of the bite as this may lead to infection of the wound.

Keep the airways open and monitor respiration and heart rate.

Mouth to mouth respiration may be required to keep the casualty alive.

Try to identify the snake if possible but don’t waste time doing this. Don’t try catching

the snake if it is still alive as this may result in another snake-bite.

Transport casualty to hospital promptly.

Neurotoxic venom is extremely powerful, so a tourniquet may be used if the casualty

is far from any hospital. The tourniquet should be released and put back on every 10

– 15 minutes to allow for blood circulation. 

Anti-venom

Anti-venom is made up of the antibodies from horses, sheep, goats, rabbits or dogs

blood. Horses are more commonly used as more blood can be tapped.

These animals are injected with small, non-lethal doses of venom over a period of

time, with the dosage slowly increased. Their immune systems respond by creating

antibodies to attack the venom. Once the animal is immune to the venom, the

antibodies are then extracted to make anti-venom.

Horse serum often causes serum sickness which is when the immune system reacts

against the foreign proteins in the serum, the reaction can cause kidney failure and

even death.

Sheep serum is made by a purified fraction of the plasma, specifically refined

antibody fragments and is a lot safer to use. Sheep serum is used for the treatment

of the American rattlesnake bites.

Monovalent anti-venom – this is made by injecting the venom of a specific species

of snake into an animal to develop the anti-venom. This is effective against one

specific snake species.

Polyvalent anti-venom – this is made by injecting the venom from a variety of  

different snake species into an animal to develop the anti-venom. This is effective

against a broad range of snake species.

type os snake venum

Types of Snake Venom, Symptoms and Treatment
September 21, 2010 by  
Filed under brown sheep
Leave a Comment

WARNING

ALL THE INFORMATION ON SNAKE-BITE TREATMENT IS THERE TO HELP YOU
UNDERSTAND HOW TO MANAGE THESE EMERGENCIES. I HOLD NO
RESPONSIBILITY WHATSOEVER FOR ANY LOSSES OR HARM DONE.

Cytotoxic venom (cell destroying)

Symptoms:

This venom destroys blood vessels, cells and tissue.
The symptoms develop slowly, 10 – 15 minutes after the bite.
The bite is very localized and painful, with severe swelling, bleeding, redness and
blistering often occurring.
Nausea and vomiting may also occur.

Once the venom enters the body, the body sends plasma (white blood cells) to the
site of the bite to try and dilute the venom. With the venom being so potent, excess
amounts of plasma cause the body tissues to swell up to the degree where the veins
are compressed very tightly up against the skin, resulting in loss of blood circulation.
The area that swells often turns to a blackish-blue color as a result of there being
limited blood circulation. If not treated promptly, within 4 hours, amputations may
necessary.

Treatment:

Keep casualty calm and advise not to move. Either sitting or lying down.
Cover the site of the bite with a clean dressing and apply a pressure bandage from
the start of the limb, then wrapping towards the bite area.
It is very important to take the pressure bandage off every 10 – 15 minutes then re-
applying it once again as severe swelling may cause circulation to be cut off by the
bandage.
Splint and elevate the limb if possible.
If a suction syringe is available, then use on the site of the bite within three minutes,
any time after that would be prove useless. Don’t use your mouth to suck the venom
out as you may have a cut or mouth ulcer where the venom can enter through.
Don’t cut the sight of the bite as this may lead to infection of the wound.
Keep the airways open and monitor respiration and heart rate.
Try to identify the snake if possible but don’t waste time doing this. Don’t try catching
the snake if it is still alive as this may result in another snake-bite.
Transport casualty to hospital promptly.

Haemotoxic venom (poisoning of blood)

Symptoms:

Often no pain or symptoms occur for 1 -3 hours and as long as 8 hours.
Casualty feels lethargic with headaches.
Nausea and vomiting may occur.
Constant bleeding from the bite wound.
Bruising as well as blood spots may occur under the skin.
Blood oozing from other bodily openings.

This venom affects the blood clotting mechanism, resulting in headaches, and loss of
blood through the bodily openings and if left untreated internal bleeding of the organs
will occur.

Treatment:

Keep casualty calm and advise not to move. Either sitting or lying down.
Cover the site of the bite with a clean dressing and apply a pressure bandage from
the start of the limb, then wrapping towards the bite area.
Splint and elevate the limb if possible.
If a suction syringe is available, then use on the site of the bite within three minutes,
any time after that would be prove useless. Don’t use your mouth to suck the venom
out as you may have a cut or mouth ulcer where the venom can enter through.
Don’t cut the sight of the bite as this may lead to infection of the wound.
Keep the airways open and monitor respiration and heart rate.
Try to identify the snake if possible but don’t waste time doing this. Don’t try catching
the snake if it is still alive as this may result in another snake-bite.
Transport casualty to hospital promptly.

Myotoxic venom (muscular necrosis)

Symptoms:

Casualty feels a sensation of the tongue thickening.
Dryness of the throat with a sense of thirst.
Stiffness of the jaw, neck, trunk and limbs muscles.
Severe pain when moving muscles. 
Muscular spasms and convulsions.
Eyelids may start drooping.
Difficulty breathing.
Urine turns to a blackish-brown color after a few hours.

Myotoxic venom contains peptides that destroy the protein in the muscle fibers, that
have a high oxidative capacity, resulting in myocrosis (muscle destruction).

The broken down protein from the muscle fibers then enters the blood stream through
to the kidneys. The kidneys overwork trying to filter out all the excess body tissue
often resulting in kidney failure and the urine turning very dark in color.

Treatment:

Keep casualty calm and advise not to move. Either sitting or lying down.
Cover the site of the bite with a clean dressing and apply a pressure bandage from
the start of the limb then wrapping towards the bite area.
Splint and elevate the limb if possible.
If a suction syringe is available, then use on the site of the bite within three minutes,
any time after that would be prove useless. Don’t use your mouth to suck the venom
out as you may have a cut or mouth ulcer where the venom can enter through.
Don’t cut the sight of the bite as this may lead to infection of the wound.
Keep the airways open and monitor respiration and heart rate.
Try to identify the snake if possible but don’t waste time doing this. Don’t try catching
the snake if it is still alive as this may result in another snake-bite.
Transport casualty to hospital promptly.
With certain species of snakes such as sea snakes the venom is extremely
powerful, so a tourniquet may be used but should be released and put back on every
10 – 15 minutes to allow for blood circulation. 

Neurotoxic venom (Nerve destroying)

Symptoms:

The casualty has speech and swallowing difficulties often accompanied by drooling.
Difficulty breathing.
Respiratory arrest.
Dizziness.
Tunnel vision or blurred vision.
Visible increase in sweating.
Convulsions.
Unconsciousness.

This venom attacks the central nervous system by causing a high loss of the
synaptic vesicles, resulting in the blockage of nerve impulses from the brain too the
muscles.

Treatment:

Keep casualty calm and advise not to move. Either sitting or lying down.
Cover the site of the bite with a clean dressing and apply a pressure bandage from
the start of the limb then wrapping towards the bite area.
Splint and elevate the limb if possible.
If a suction syringe is available, then use on the site of the bite within three minutes,
any time after that would be prove useless. Don’t use your mouth to suck the venom
out as you may have a cut or mouth ulcer where the venom can enter through.
Don’t cut the sight of the bite as this may lead to infection of the wound.
Keep the airways open and monitor respiration and heart rate.
Mouth to mouth respiration may be required to keep the casualty alive.
Try to identify the snake if possible but don’t waste time doing this. Don’t try catching
the snake if it is still alive as this may result in another snake-bite.
Transport casualty to hospital promptly.
Neurotoxic venom is extremely powerful, so a tourniquet may be used if the casualty
is far from any hospital. The tourniquet should be released and put back on every 10
– 15 minutes to allow for blood circulation. 

Anti-venom

Anti-venom is made up of the antibodies from horses, sheep, goats, rabbits or dogs
blood. Horses are more commonly used as more blood can be tapped.

These animals are injected with small, non-lethal doses of venom over a period of
time, with the dosage slowly increased. Their immune systems respond by creating
antibodies to attack the venom. Once the animal is immune to the venom, the
antibodies are then extracted to make anti-venom.

Horse serum often causes serum sickness which is when the immune system reacts
against the foreign proteins in the serum, the reaction can cause kidney failure and
even death.

Sheep serum is made by a purified fraction of the plasma, specifically refined
antibody fragments and is a lot safer to use. Sheep serum is used for the treatment
of the American rattlesnake bites.

Monovalent anti-venom – this is made by injecting the venom of a specific species
of snake into an animal to develop the anti-venom. This is effective against one
specific snake species.

Polyvalent anti-venom – this is made by injecting the venom from a variety of  
different snake species into an animal to develop the anti-venom. This is effective
against a broad range of snake species.

johne’s disease

بسم الله الرحمن الرحيم

johne’s Disease in Sheep and Goat

Recommendations for Diagnosis and Control

Report to the Sheep and Goat Committee
of the U.S. Animal Health Association
S.M. Stehman1 and W.P. Shulaw2

1 Diagnostic Laboratory, College of Veterinary Medicine, Cornell University, Ithaca,

NY
2 Veterinary Extension, College of Veterinary Medicine, The Ohio State University, Columbus, OH

While many features of infection caused by M. paratuberculosis are similar across ruminant species, the clinical presentation, and the availability, performance, and interpretation of diagnostic tests differs between cattle and other ruminants such as sheep, goats, and farmed deer (30). Variations in Mycobacterium paratuberculosis strains, isolated from different host species, may contribute to some of the differences (7,11). Host variation in response to infection contribute to others. Because of these variations, diagnostic tests validated in cattle populations are not necessarily accurate in small ruminant populations and should be considered experimental until full validation is completed.

Clinical Signs and Epidemiology

The age of onset of clinical disease tends to be younger in sheep, goats, llamas, and deer than in cattle. Unlike cattle, which typically present with chronic diarrhea with weight loss, sheep, and goats present with chronic weight loss as the primary clinical sign of Johne’s disease. Only 10-20 percent of clinical cases present with diarrhea or clumping of feces in the end stages of the disease. Hypoproteinemia with intermandibular edema and wool break and poor fleece condition have been reported in paratuberculous sheep (5,10). Anorexia, depression or clumping of feces may be present in the end stages of the disease in goats (16); however, diarrhea was an infrequent finding. Disseminated infections have been documented in llamas, deer, goats(9) (including mammary gland), and sheep (33). Infection is transmitted primarily by feces from infected animals. In utero and milk or colostral transmission has been reported in cattle and should be considered a possibility in other ruminants with disseminated infection.

Paratuberculosis must be differentiated from other causes of chronic weight loss including dental disease, parasitism, internal abscesses due to Corynebacterium pseudotuberculosis, caprine arthritis encephalitis virus (CAEV) or ovine progressive pneumonia virus (OPPV) infections in goats and sheep, respectively, and malnutrition (inadequate macro nutrients, energy and protein and/or micro nutrients, such as cobalt or copper).

Few large-prevalence-scale studies have been done; however, paratuberculosis can be an important infection in small ruminants in certain regions.

Investigations into prevalence in sheep and goats have been reported from Europe, Iceland, Britain, South Africa, New Zealand and Australia, where these industries are relatively more important than in North America. A Spanish study (2) found that 31.4 percent of flocks (n=226) and 2-5 percent of sheep (n=4504) tested by ELISA and AGID were positive for paratuberculosis. In this study, an association was found between ELISA seropositivity and decreased milk production in dairy sheep in sheep with subclinical paratuberculosis. Clinical paratuberculosis can be a significant cause of culling within individual flocks (10).

In Norway the infection rate in heavily infected goat herds approached 50 percent; annual slaughter surveys detected paratuberculosis in 4.7 percent to 9 percent of goats tested over a 15-year period (25). In North America, West reported a 3-percent prevalence of fecal-culture-positive goats in a survey of 238 goats on six farms in Central California (35). Paratuberculosis infection was identified in two of six herds tested by fecal culture; prevalence within the infected herds was 6 and 10 percent. The age of infected animals ranged from 1 to 5 years with highest infection rates detected in older animals.

Pathology

Gross lesions associated with clinical Johne’s disease in sheep include variable thickening of the distal small intestine, enlargement and edema of the associated lymph nodes, occasional loss of mesenteric fat, and enlarged mesenteric lymphatics in severe cases (5,6,24,26). In sheep with clinical disease, the gross intestinal lesions varied from mild thickening (36 percent) to severe corrugation of the mucosa (48 percent); the ileum was the most frequently and most severely affected site (5). Caseation and necrosis were not observed in sheep in a New Zealand study (5) and were found only infrequently in Shulaw’s study (26) in the United States.

Gross lesions in goats are also variable. The most commonly reported lesions are thickening of the distal small intestine and enlargement of mesenteric lymph nodes (16,34). Corrugation of the ileal mucosa was observed in approximately 38 percent of cases in one study (16). Mesenteric and ileocecal lymph node enlargement with edema were relatively common lesions; occasional caseous necrosis and mineralization were also noted(14,34).

Histological lesions of two types were noted in sheep with clinical disease (5,6,23,26). The majority of sheep had extensive epithelioid cell infiltration into mucosa and submucosa with numerous acid-fast organisms. Fewer sheep had localized lymphocytic infiltration with few epithelioid cells and acid-fast organisms observed. Similar lesion types have been reported in goats (14,16,34). Granulomatous enteritis and lymphadenitis occur in more severely affected cases with infiltration of the submucosa and lymph nodes by large epithelioid and multinucleate giant cells containing acid-fast organisms.

Mesenteric and ileocecal lymph node changes included sinus histiocytosis, infiltration of epithelioid cells containing acid-fast organisms, occasional multinucleate giant cells and foci of caseous necrosis (26). Foci of epithelioid cells and periportal lymphocytic infiltration were changes noted in the livers of paratuberculosis infected sheep (7).

Granulomatous lesions were also noted in the liver and lungs of goats with advanced paratuberculosis (14,34).

Diagnosis

The chronic, spectral nature of this infection has hampered development of a single, diagnostic test. Infected animals often shed organisms months prior to detectable immunologic responses to the disease. Both fecal shedding and the immune response to M. paratuberculosis can be intermittent. The existing immunologic and culture methods correlate better and more accurately predict disease during clinical stages when most animals shed large numbers of organisms than during sub-clinical stages when fecal shedding occurs less frequently and at lower levels. Current tests are more predictive of disease at the herd level than at the individual animal level.

Culture: M. paratuberculosis is found in clumps within macrophages in the intestinal lamina propria, intestinal lymph nodes, and in feces of infected ruminants. Sheep isolates have been extremely difficult to isolate using culture media (Herrold’s egg yolk medium) and techniques routinely used to isolate bovine, goat and deer strains (5,7,8,11,26). In sheep flocks, the fecal culture detects less than 12 percent of clinical cases (8) and requires up to 12 months of incubation, making it an impractical diagnostic test. Paratuberculosis diagnosis in sheep is based upon compatible clinical signs and typical gross or histopathologic lesions with acid-fast organisms. The best tissues for diagnosis are the ileocecal junction and ileocecal and caudal mesenteric lymph nodes. Acid- fast smears of feces will identify approximately 33 percent of clinically affected sheep and 57 percent of sheep with histopathological lesions (8); but this provides only a presumptive diagnosis of mycobacteriosis. The PCR test, developed for detection of M. paratuberculosis in bovine feces, detected 64 percent of sheep with histopathologic lesions of paratuberculosis (8). Unlike the situation in cattle, the sensitivity of the PCR test in sheep was much greater than fecal culture(8).

Recent studies have reported improved isolation of sheep strains using Lowenstein-Jensen without pyruvate (LJP) (1,20) and Middlebrook 7H11/OADC media1. Colonies on Lowenstein-Jensen medium were difficult to visualize due to their small size and required up to 40 weeks to grow. Fecal and tissue samples from sheep confirmed to be infected by paratuberculosis were on average 54-percent positive by culture using LJP (20). The culture technique described by Aduriz (1) using Middlebrook 7H11 media resulted in visible colonies and was slightly improved by not supplementing the medium with mycobactin J. All isolates were confirmed to be M. paratuberculosis with polymerase chain reaction (PCR) using insertion sequence IS900.

Paratuberculosis was confirmed by histopathology or culture in 32/35 sheep showing clinical signs of disease from flocks with known infection(1). M. paratuberculosis was isolated within 8 to 16 weeks of culture from 25 of 32 (78 percent) sheep with confirmed infection; samples from three sheep were contaminated (9 percent). Fecal culture was less sensitive (70 percent) than combined cultures of feces, ileum and ileo-cecal lymph node (100 percent). By comparison, in this study, AGID and ELISA tests detected infection in 93.8 and 96.4 percent of infected animals respectively. While these are promising results, this technique has not been widely adapted for diagnostic use.

In goat herds, fecal culture detected 76-86 percent of goats with confirmed, clinical paratuberculosis (16,34). To the author’s knowledge, no studies have reported the sensitivity of fecal culture for detection of subclinical paratuberculosis. Fecal culture will readily detect subclinically and clinically infected deer unless they are infected by the sheep type strain of M. paratuberculosis. When compared with culture of multiple tissues and histopathology as “gold standards”, fecal culture detected 45-91 percent of subclinically and clinically infected fallow deer respectively (29).

Serological Tests in Sheep

Serologic tests used to screen for paratuberculosis in small ruminants include the agar-gel immunodiffusion (AGID), complement fixation (CF) tests, and enzyme-linked immunoassay (ELISA). Cell mediated immunity and fecal shedding typically precede humoral immunity; thus, serological assays detect animals in the later stages of infection. The AGID and CF tests are the most commonly used tests. Various ELISA methods have been used in sheep and goats; however, full validation in paratuberculosis-free and infected herds and flocks with high and low prevalence is currently lacking, making interpretation of the ELISA difficult.

Specificity is best measured in populations free of paratuberculosis. Using sera from SPF sheep and from a flock with no history of paratuberculosis, Hilbink18 reported specificities of 97.5 to 100 percent for the AGID test, 96 to 100 percent for the CF test, and 91 to 100 percent for the two ELISA tests. All positive reactions were considered to be weak positives in this group. However, ELISA and CF tests detect cross reacting antibodies to Corynebacterium pseudotuberculosis (3,12,18,24) resulting in reduced specificity in flocks infected with caseous lymphadenitis (CL). Specificity was 88-98 percent in groups of paratuberculosis-free sheep without CL and 64 percent in sheep with CL in a Canadian experiment32. Depending on the antigen used in ELISA tests, cross reacting antibodies to CL persisted from 45 to 90 days (18). A declining ELISA titer with repeated testing over time may suggest cross reacting antibodies rather than true infection. The AGID test for paratuberculosis does not appear to detect antibodies to CL (3,12,18,26). In sheep with CL, but without paratuberculosis, use of the AGID test on sera with high ELISA values increased specificity to 95 percent (32).

Determining test sensitivity for paratuberculosis is difficult due to our inability to diagnose early infection by any means. Reported test sensitivity varies and depends on the stages of disease represented within the herd or flock and the antigens used in the serologic test (3,18,32). The sensitivity of the AGID, CF and ELISA has been reported to be 87-100 percent for sheep showing clinical signs (18). However, the sensitivity of these tests may be less than 20 percent in individuals with subclinical disease with varying severity of lesions (18). In flocks with low prevalence of disease, the sensitivity of the ELISA was estimated to be 48 percent (12). In three studies, the AGID test sensitivity equaled or exceeded ELISA test sensitivity in subclinical and clinical sheep (12,18,32).

The AGID test appears to be the most specific serologic test with good sensitivity (80 percent or greater) for detection of individual animals in the later stages of disease (2,3,13,18,26). This test can be used to screen animals over 1 year of age to identify individuals most likely shedding organisms to herd mates and offspring. AGID test positive animals do not revert to negative status (2) and are usually culled from the flock within a year (2). Incomplete correlation between seropositivity by ELISA and AGID has been reported, suggesting that, in some animals, the two tests may be detecting different populations of antibody (3,26,31,32). Enzyme linked immunosorbent assays (ELISA) have been used in North America (12,31,32) and in New Zealand (14) on a research basis. At this time, we can only recommend the ELISA as a herd-screening tool. The adult herd’s ELISA profile, i.e., frequency distribution of ELISA values, could be used to estimate the risk and possibly level of infection in the flock; but more research is needed to resolve issues of poor sensitivity in subclinical animals and more importantly, specificity issues.

Serological Tests In Goats

The AGID test has been reported to be as sensitive as fecal culture in goats (86 percent) (27,34); however, not all fecal-culture-positive animals were positive by AGID (16,27,34); nor were all AGID-positive goats consistently fecal-culture positive (27). The greatest sensitivity is achieved using both tests. A more economical testing option may be to screen goats 1 year of age or older with the AGID test followed by fecal cultures of the seronegative goats. In goats, the CF test has a reported sensitivity of 18 percent (34) to 80 percent (14) and often gives anticomplementary reactions due to non-specific consumption of complement resulting in neither a positive nor negative test.

A modified commercial ELISA test has been evaluated in goats with an apparent test sensitivity of 54 percent (4). Nineteen of 35 goats (54 percent) that had IS900 probe-positive feces also had antibody; 18 of 128 (14 percent) probe-negative goats in the same infected herd were antibody positive. In the population tested, specificity was 100 percent (0/128 goats were antibody positive) in a herd clinically free of paratuberculosis (4). Molina (22) reported on use of an ELISA in goat populations with different prevalences of paratuberculosis in Spain. He reported a sensitivity of 88 percent in a group of goats histopathologically and culture positive for paratuberculosis; specificity was 94 percent in a group of healthy culture-negative goats. The accuracy of this ELISA was high (90 percent) in herds with a high incidence of disease. In herds with low incidence of paratuberculosis, the predictive value of a positive test was less than 50 percent, requiring confirmatory culture in animals with high ELISA values. However, the predictive value of a negative test was high in low prevalence herds. Milner (21) reported the sensitivity of the absorbed ELISA (87 percent) to be higher than the AGID test (73 percent) in a group of goats with clinical disease. However, no confidence limits were presented so this finding may not be real. Test performance appears to be associated with the prevalence and severity of lesions (14). Caseous lymphadenitis, which causes decreased specificity of the paratuberculosis ELISA in sheep, is also common in goat herds. No reports have addressed specificity of the ELISA in goat herds with caseous lymphadenitis (CL) infection. There are no fully validated and licensed ELISA tests for paratuberculosis in sheep or goats in North America.

Assessing Infection in the herd or flock

The severity of infection or degree of spread within a herd or flock depends on management conditions, number of animals infected and duration of infection in the group. Because of the long incubation period, many animals in the group may be exposed or subclinically infected by the time each clinical case becomes apparent. This has been referred to as the iceberg effect of Johne’s disease. The clinical case is often the tip of the iceberg in the herd or flock of animals. For each clinical case, up to 15 to 25 animals may be subclinically infected on the farm. The ratio of clinical to subclinical cases depends on several important factors:

1. How long has Johne’s disease been present or suspected on the farm?
2. In that period, how many cases have been identified or suspected?
3. What was the age at onset of the first and subsequent cases?
4. Was the first clinical case home-reared or purchased?
5. How much contact did the young stock on the farm have with the clinical case, with other suspect or sick animals, or with adult manure?
6. What is the level of manure management and sanitation on the farm?
7. How open is the flock to animal movement from sources of unknown infection status?

Some understanding of disease prevalence in a herd is necessary for appropriate interpretation of serologic test results. Predictive value of a positive test will always be low in low-prevalence herds unless test specificity is 100 percent (fecal culture or IS900 probe). Testing has been used as a tool to evaluate the extent of infection on the farm, to identify infected individuals, to determine the level of intensity required of a control program and to monitor success of the program. However, because of the insensitivity of our current diagnostic tests, test and cull programs based on serology alone will not control the infection. In goat herds, whole herd fecal culture is more valuable in aggressive testing schemes because animals shedding the organism can be detected and isolated or culled. In sheep flocks where fecal culture is not an option, AGID testing will detect the most heavily infected animals in a flock. If only a subset of the flock is tested, animals with body condition score of less than 2 may provide the most information about Johne’s status in the flock.

The frequency of testing will vary with each farm’s goals and available funds for sample collection and testing costs. Farms choosing an aggressive program may elect to test on a 6-month or annual basis. Farms with limited resources may elect to test just once to determine their level of infection and then, with that information, develop an appropriate control program. If a single herd test is used, it is important to look for patterns of infection to focus the control program. For example, is infection more common in certain age groups, family lines, purchased animals or home-reared individuals?

Infection can also be monitored without testing by frequent assessment of body condition or weight and keeping records of numbers and causes of wasting on the farm. Animals unable to maintain mature body weight comparable to the rest of their group are suspect for infection if Johne’s is present in the herd. This method of monitoring paratuberculosis is slightly less sensitive than serology if no other confounding causes of wasting such as inadequate nutrition, poor dentition, parasitism, OPPV infection or caseous lymphadenitis are present in the flock.

Management of Purchased Replacements

Johne’s disease is most often introduced into a herd by purchasing infected animals. Unfortunately, there are no tests capable of detecting early infection in a purchased animal. The seller may not know they have infection on their farm so the buyer must know enough about the disease to ask the right questions. A buyer can manage the risk of introducing infection onto their farm by assessing risk of infection prior to purchase and by managing purchased animals on their own farms to prevent spread of infection. These management practices, referred to as biosecurity, are useful for Johne’s disease and most other infectious diseases; however, where possible, a closed herd provides the best security.

A buyer should determine if the risk of infection in purchased animals is higher or lower than the risk of infection on their own farm and proceed accordingly. Determining the infection status of an individual prior to purchase depends on the degree of exposure to the disease. It is important to determine the status of the farm on which the animals being considered for purchase were born or spent their early months of life. Auction barns and dealer herds usually offer little to no history to assess the risk of exposure. When possible, buy directly from a breeder with a good reputation. Buyers should inquire about the infection status of potential source farms prior to purchase. Under Ohio law, an inquiry with a negative response establishes warranty.

The source herd should be ranked from lowest to highest risk for infection. Ideally, the best herds to purchase animals from are herds with repeated negative whole herd tests or closed herds with no history or suspicion of clinical disease on the farm. Few herds are certified test negative. Herds with or without test history which are practicing good management to control disease offer a lower risk than herds actively buying and selling animals with no management program in place. A single current negative whole herd test indicates a low risk of significant infection in that herd. Even herds with a low number of test positive animals, or only isolated cases in older or purchased animals, which are practicing good paratuberculosis management present a lower risk than herds with known infection and poor management, sale barns, or dealer herds.

Animals with a low-body-condition score should be considered at high risk of being infected with paratuberculosis or other common wasting diseases in small ruminants and should be handled accordingly. If the herd or flock history is unavailable or unknown, screening purchased animals with an AGID test will detect most animals with advanced paratuberculosis. If the test is negative, the animal may still be infected but has less of a chance of being in advanced stages of infection. If prepurchase screening is not possible, the buyer should segregate purchased animals and their manure and test prior to commingling with the home herd or flock. Given the general lack of sensitivity for detection of infection in individual animals, owners purchasing animals of unknown infection status should always use good sanitation and management of feces to prevent spread of infection from subclinically infected animals.

Unless specific regulations exist in a state, the seller is under no legal obligation to voluntarily disclose the infection status of an individual or herd so controlling the disease is up to the buyer. However, if sellers deny knowledge of a positive-infection status when specifically asked by the buyer and knowingly sells infected animals, they potentially could be sued in civil court by the buyer.

Management and Control on Infected Farms

Goat – Aggressive Elimination of Infection: Tests available for use in test-and-cull programs (fecal culture and serology) are more sensitive in goats than in sheep. An example of an aggressive program designed to eliminate infection from a farm was described by Gezon et al (16). Paratuberculosis was controlled and eliminated from a goat herd, in which replacements were frequently purchased, in 7 years by use of stringent management guidelines, frequent testing, and culling or segregation of test-positive animals (22). The testing protocol included quarterly screening of serum with an AGID test and semiannual fecal cultures. Body weights were monitored monthly. If progressive weight loss was noted, testing was performed on a monthly basis. Goats identified as positive by either test were strictly segregated in a separate building or culled. The goal of the detection program was early recognition and removal of infected animals to decrease buildup of M. paratuberculosis in the environment and to decrease the risk of transmission to kids reared on the farm and to uninfected herd mates. Purchased replacements were segregated and screened for infection before they entered the herd. Young stock were isolated away from adults and away from contact with their manure. Management changes focused on reducing fecal-oral transmission by using keyhole feeders, metal grain troughs and automatic waterers. Pasture use was discontinued. Goat manure was plowed under and pastures were reseeded before forage crops were harvested. Pens were cleaned several times a week rather than once weekly and personnel were instructed to disinfect footwear between pens and barns (16).

Management: Commercial herds or flocks may not find elimination of infection to be economically feasible or warranted. Programs designed to control the level of infection in herds or flocks by testing for and culling the heavy shedders alone have not controlled the shedder rate in subsequent years (25,26). Management of manure to control fecal-oral transmission, especially to young stock, is an important adjunct to test-and-cull programs. To limit fecal-oral transmission to offspring, care should be taken to avoid fecal buildup in birthing areas and contamination of replacement rearing areas by adult manure or runoff. Use of deeply bedded, and clean pens, to prevent exposure of neonates to fecal contaminated objects is recommended. The dams’ udders and fleece should be free of fecal contamination. Ewes should be shorn or crutched prior to lambing. Removal of young at birth and feeding of colostrum and milk from a known Johne’s-negative source will further limit transmission if a herd manager can afford the intensive labor involved in artificial rearing. If hand rearing is not an option, lambs should be weaned as early as possible and removed from contact with adult manure. Separation can be achieved using separate facilities, partitions, low traffic or buffer zones. Avoid contamination of mangers and feed with manure on boots, shovels, brooms, wheel barrow tires, and other cleaning implements.

In a rigorous control program, dam status needs to be taken into consideration. Dams showing signs of weight loss and subclinical dams shedding large amounts of organism are at risk for transmitting infection before birth in utero. Though the frequency of in utero transmission has not been measured in sheep and goats, disseminated infections do occur. Given the risk of in utero transmission, or, of infection via contaminated colostrum or milk, the risk of keeping offspring of infected animals must be weighed against the cost of having fewer replacements. Lambs from suspect ewes can be raised for marketing to slaughter but should not be raised as replacement stock for the home farm or for sale as replacement stock to other farms.

In grazing herds or flocks, control of infection is particularly problematic and few studies have investigated controlling paratuberculosis under this type of management. The decision to avoid grazing is not economical for many producers. On pasture systems, control will depend on identifying the most heavily shedding animals and removing them from pasture to prevent environmental contamination. Pasture rotation and avoidance of overgrazing will decrease contact with feces on pasture. When possible, young stock should be weaned as early as possible and removed to clean pasture without contact with adult manure. Commingling with other ruminant species should be avoided if their Johne’s status is unknown. Water sources must also be kept free of contamination.

Thorough and frequent removal of manure is the foundation of paratuberculosis control. Manure should be spread on cropland–not on fields that will be grazed or harvested for forages in the same season. All animals should be managed as if they are infected. If testing and culling is not possible, good sanitation will always provide the safety net against spread of the infection.

Vaccination: Vaccination has been used to control paratuberculosis in sheep in Iceland (28) and Britain (10). In Iceland (28), lambs on 141 farms were divided in vaccinated (3273 lambs) and unvaccinated (3184 lambs) groups on each farm. Vaccination reduced mortality due to paratuberculosis by 93 percent (28). Cranwell (10) used vaccination and management changes to control paratuberculosis in a flock with a 9-percent premature culling rate due to clinical infection. All lambs kept as replacements were vaccinated at less than a month of age with the Weybridge modified-live vaccine. Management changes included immediate culling of clinical cases and their most recent lambs. Individual animal identification and improved record keeping were also instituted. Within three years, clinical cases were substantially reduced; vaccine failure rate was estimated at 0.6 percent (4/580). Based on a cost/benefit analysis and epidemiologic simulation model developed by Juste (19), vaccination of replacements appeared to be the most cost-effective strategy for controlling paratuberculosis in sheep flocks. However, assumptions of the model may not fit every management situation.

Vaccination has also been used successfully in goats herds in Norway to reduce the prevalence of paratuberculosis from 53 percent to less than 1 percent over a period of 15 years (25). The “test, cull and management” method of control used prior to the initiation of the vaccination program was considered ineffective due to the insensitivity of the tests available to diagnose paratuberculosis. The option for monitoring infection status with serologic tests is eliminated in vaccinated herds and flocks. Vaccination is not currently an option for control in the United States due to lack of an approved vaccine for small ruminants.

Certification of Flocks and Herds: Most states that offer paratuberculosis certification follow the National Paratuberculosis Certification Program Guidelines (NPCPG) adopted by the U.S. Animal Health Association in 1993 or a modification thereof. The National Certification Guidelines relate to paratuberculosis in cattle but with slight modification would also apply to goat herds. The program guidelines are not appropriate for sheep flock certification.

Basically, this voluntary program recommends whole herd testing of cattle over 20 months of age with either a serum antibody test or an organism detection test such as the fecal culture at least annually. Annual rotation between serum antibody tests and an organism detection test is recommended. Herds are certified at increasing levels reflecting the number of whole-herd negative tests achieved up to level 5. After five whole-herd negative tests, certification is maintained by annual testing with either test. Requirements for herd additions and the consequences of finding a positive animals in a certified herd or selling a positive animal from a certified herd are addressed. Testing must be performed at an accredited laboratory. Seropositive animals are only considered truly infected if confirmed by fecal culture or DNA probe. This program attempts to recognize herds for attaining a Johne’s-test-negative status. Such herds will serve as an important source of paratuberculosis-free or low-risk replacements for herds purchasing animals in the future.

We recommend the following modifications of the NPCPG to make the program more applicable to goat herds:

(1) Require testing of all goats over 1 year of age in the herd; and
(2) At this time, the serology test of choice is the AGID test until the ELISA is fully validated for goats; however, fecal culture is the recommended test.

Each State veterinarian has a copy of the NPCPG and can provide interested producers with details of the state’s position on paratuberculosis and details of the NPCPG.

Given the poor sensitivity of current diagnostic tests in sheep, certification that a flock is free of paratuberculosis would be very difficult if not impossible. Continuous monitoring of suspect (animals with a body-condition score less than 2) or cull sheep by histopathology would be required. An annual negative whole-flock AGID test with no history of clinical disease or evidence of infection in suspects examined by histopathology could be used to certify a flock as test negative indicating a low risk of infection. With each negative flock test, another level of test-negative certification could be added. With each increasing level, the flock would be considered at a lower risk of being infected.

Summary

Paratuberculosis in small ruminants is geographically widespread. In some herds and flocks, clinical paratuberculosis, primarily causing chronic weight loss, can be a significant cause of early culling. The effects of subclinical disease are less defined but may include decreased milk production in milking sheep and decreased weight gain in deer raised for slaughter. Paratuberculosis can also cause economic losses due to reduced in sales of breeding animals from pure bred flocks and herds.

Diagnosis in goats, deer and llamas is primarily based upon culture of feces or tissues and histopathology. Due to difficulty in growing sheep strains of M. paratuberculosis, diagnosis is based upon finding compatible histopathological lesions with acid-fast organisms. The AGID test is a highly specific serologic test for diagnosis of clinical paratuberculosis, and correlates with fecal shedding of the organism and degree of severity of the lesions, but is less sensitive than fecal culture at the herd or flock level for detection of subclinical disease in goats. The CF test detects clinically affected animals but suffers from poor specificity. ELISA methods are being evaluated for use as a herd screening test in sheep, goats. The test suffers from a lack of specificity in herds and flocks infected with caseous lymphadenitis. Absorption of sera with Corynebacterium pseudotuberculosis or M. phlei may improve specificity, but more studies are needed. Currently, ELISA testing for paratuberculosis should be considered experimental in small ruminants. If used, it should be considered a herd or flock screening tool only to evaluate infection on a whole herd basis in adult animals over one year of age. Use of the ELISA for diagnosis of individual cases requires confirmation with a more specific serologic test or organism detection test such as fecal culture or PCR. Larger studies are needed to evaluate the sensitivity of ELISA methods; relatively small studies have reported equal or lower sensitivity compared to AGID for diagnosis in sheep.

Paratuberculosis can be managed and eliminated (from goat herds) with stringent management combined with frequent testing and culling, or by vaccination (where permitted) combined with management of fecal-oral transmission. Management of fecal-oral transmission is particularly important to prevent exposure of young stock to the infection. Control programs vary with the goals and economics of each farm. The frequency of testing and level of management intervention will be determined by each farm’s abilities, priorities, and finances.

Efforts should be made through State Departments of Agriculture or through breed associations to recognize flocks or herds with no history of infection or at low risk of being infected using standardized national certification guidelines. Test negative farms will be an important source of low risk replacements for flocks and herds purchasing animals.

References

1. Aduriz, JJ, Juste, RA, Cortabarria, N: Lack of mycobactin dependence of mycobacteria isolated on Middlebrook 7H11 from clinical cases of ovine paratuberculosis. Vet Microbiol 45(2-3):21, 1995
2. Aduriz A, Juste RA, Saez de Ocariz C: An epidemiologic study of sheep paratuberculosis in the Basque Country of Spain: serology and productive data. In Proceeding of the Fourth International Colloquium on Paratuberculosis, Cambridge, 1994, p 19
3. Brooks, BW, Robertson, RH, Corner, AH, et al: Evaluation of the serological response of sheep in one flock to Mycobacterium paratuberculosis by crossed immunoelectrophoresis. Can J Vet Res, 52(2):199, 1988
4. Burnside, DM, Rowley, BO: Evaluation of an enzyme-linked immunosorbent assay for diagnosis of paratuberculosis in goats. Am J Vet Res, 55(4):465, 1994
5. Carrigan, MJ, Seaman, JT: The pathology of Johne’s disease in sheep. Aust Vet J, 67(2):47, 1990
6. Clarke CJ, Little, D: Histopathological and morphometric changes in the intestine in ovine paratuberculosis. In Proceeding of the Fourth International Colloquium on Paratuberculosis, Cambridge, 1994, p 202
7. Collins, DM, Gabric, DM, de Lisle, GW: Identification of two groups of Mycobacterium paratuberculosis strains by restriction endonuclease analysis and DNA hybridization. J Clin Microbiol 28(7):1591, 1990
8. Collins, DM, Hilbink, F, West, DM, et al: Investigation of Mycobacterium paratuberculosis in sheep by faecal culture, DNA characterization and the polymerase chain reaction. Vet Rec 133(24):599, 1993
9. Collins, M, Teubert, D, Krebs, VR: Paratuberculosis in 18 pygmy goats from a herd of 29. Results from serial testing by Bactec fecal culture, serum antibody ELISA, and gamma interferon assay. In Abstracts of the 38th Annual Meeting of the American Association of Veterinary Laboratory Diagnosticians, Sparks, Nevada 1995, p. 43
10. Cranwell, MP: Control of Johne’s disease in a flock of sheep by vaccination. Vet Rec 133(9):219, 1993
11. De Lisle, GW, Collins, DM, Huchzermeyer, HF: Characterization of ovine strains of Mycobacterium paratuberculosis by restriction endonuclease analysis and DNA hybridization. Onderstepoort J Vet Res 59(2):163, 1992
12. Dubash, K, Shulaw, WP, Bech-Nielsen, S, et al: Evaluation of an enzyme-linked immunosorbent assay licensed by the USDA for use in cattle for diagnosis of ovine paratuberculosis. J Vet Diagn Invest 7:347, 1995
13. Dubash, K, Shulaw, WP, Bech-Nielsen, S, et al: Evaluation of an agar gel immunodiffusion test kit for detection of antibodies to Mycobacterium paratuberculosis in sheep. J Am Vet Med Assoc 208(3): 401, 1996
14. Garcia Marin, JF, Chavez, G, Ajuriz, JJ, et al. Prevalence of paratuberculosis in infected goat flocks and comparison of different methods of diagnosis. Proceedings of the Third International Colloquium on Paratuberculosis, eds. RJ Chiodini, and JM Kreeger, Orlando, Florida, 1991, p 157
15. Garcia Marin, JF, Perez, V, Bardiola, JJ. Prevalence and type of paratuberculosis lesions in sheep and their relation with the diagnosis by AGID test. Proceedings of the Third International Colloquium on Paratuberculosis, eds. RJ Chiodini, and JM Kreeger, Orlando, Florida, 1991, pp. 172
16. Gezon, HM, Bither, HD, Gibbs, HC: Identification and control of paratuberculosis in a large goat herd. Am J Vet Res 49(11):1817, 1988
17. Gunnersson, E: Isolation of Mycobacterium paratuberculosis from sheep and cattle in Iceland. Acta Vet Scand 20:191, 1979
18. Hilbink, F, West, DM, de Lisle, GW, et al: Comparison of a complement fixation test, a gel diffusion test and two absorbed and unabsorbed ELISAs for the diagnosis of paratuberculosis in sheep. Vet Microbiol 41:107, 1994
19. Juste, RA, Casal, J: An economic and epidemiologic simulation of different control strategies for ovine paratuberculosis. Prev Vet Med 15(2-3):101, 1993
20. Juste, RA, Marco, JC, Saez, de OC, et al: Comparison of different media for the isolation of small ruminant strains of Mycobacterium paratuberculosis. Vet Microbiol 28(4):385, 1991
21. Milner, AR, Mack, WN, Coates, KJ: A modified ELISA for the detection of goats infected with Mycobacterium paratuberculosis. Aust Vet J 66(9):305, 1989
22. Molina, A, Morera, L, Llanes, D: Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of antibodies against Mycobacterium paratuberculosis in goats. Am J Vet Res 52(6):863, 1991
23. Perez V, Garcia Marin JF, Badiola JJ: Description and classification of different type of lesion associated with natural paratuberculosis infection in sheep. J Comp Path 114:107-122, 1996
24. Pepin, M, Marly, J, Pardon, P: Corynebacterium pseudotuberculosis infection in sheep and the complement fixation test for paratuberculosis. Vet Rec 120(10):236, 1987.
25. Saxegaard, F. Fodstad, FH: Control of paratuberculosis (Johne’s disease) in goats by vaccination. Vet Rec 116:439, 1985
26. Shulaw, WP, Bech-Nielsen, S, Rings, DM, et al: Serodiagnosis of paratuberculosis in sheep by use of agar gel immunodiffusion. Am J Vet Res 54(1):13, 1993
27. Sherman, DM, Gezon,HM: Comparison of agar gel immunodiffusion and fecal culture for identification of goats with paratuberculosis J Am Vet Med Assoc 177(12):1208, 1980
28. Sigurdsson, B: A killed vaccine against paratuberculosis (Johne’s disease) in sheep. Am J Vet Res 21:54, 1960
29. Stehman, SM, Rossiter, CR, Shin, S et al: Severe paratuberculosis in a farmed fallow deer herd. In Abstracts of the 38th Annual Meeting of the American Association of Veterinary Laboratory Diagnosticians, Sparks, Nevada 1995, p. 44
30. Stehman SM:Paratuberculosis in Sheep, Goats, Deer and South American Camelids in Paratuberculosis (Johne’s Disease), ed. RW Sweeney, Vet. Clinics of N. America; Food Anim. Pract. 12(2):441-455, 1996
31. Sugden, EA, Brooks, BW, Young, NM, et al: Chromatographic purification and characterization of antigens A and D from Mycobacterium paratuberculosis and their use in enzyme-linked immunosorbent assays for diagnosis of paratuberculosis in sheep. J Clin Microbiol 29(8):1659, 1991
32. Sugden, EA, Corner, AH, Samagh, BS, et al: Serodiagnosis of ovine paratuberculosis using lipoarabinomannan in an ELISA. Am J Vet Res 50(6):850, 1989
33. Tamarin, R, Landau,M: Congenital and uterine infection with Mycobacterium johnei in sheep. Refuah Vet 18:44, 1961
34. Thomas, GW: Paratuberculosis in a large goat herd Vet Rec 113:464, 1983
35. West, GW, Agbo, M, Willeberg, P et al: Paratuberculosis in California dairy goats. Calif Vet 33:28, 1979

سلسلة الأغنام – الحبصي (الحبش – الحجري -الحرش)

يبدو أن الاصل في تسمية هذا السلالة هي منشؤها في الحبشة كما أن تسميتها بالحجري نظرا لأنها تنتشر في الجبال والأماكن الصخرية وهي سلالة تنتمي إلى الأغنام ذات الالية وعطاء جسمها يكون اساسا من الشعر.

وتتركز تربية هذه السلالة في جبال عسير والحجاز وفي بعض الوديان حيث تعيش على الحجبال والأماكن الصخرية ومن هنا تم تسميتها بالحجري.

ولون الجسم ابيض يميل الى الاصفرار وقد تكون الرأس او جزء من الرأس وحول الفم يكون ملون.
والقرون غي موجودة في هذه السلالة ، والآذان قصيرة وصغيرة او متوسطة وتخرج إلى جانبي الرأس أفقيا.
الإلية اسطوانية مكتنزة بالدهن وملتفة ورفيعة في نهايتها.
متوسط وزن الحملان عند الولادة 1.5 كجم وانتاج الحليب فيها ضعيف حيث يصل إلى 30 كجم في الموسم.
وشعر الأغنام الحرية عديم القيمة ولذلك هو لا يجز.
تستطيع الأغنام الحرية التوالد طول العام، وتلد لأول مرة في عمر 17-18 شهر .

يقال أن الأغنام الحرية في تهامة وعسير تلد مرتين في السنة وأن معظم نتاجها يكون توائم .

من مميزات هذه السلالة:
أنها تستطيع التأقلم في البيئات الجبلية وتتحمل نقص الغذاء.

سلسلة الأغنام – العرب

الأغنام العُرْبْ ( بضم العين وسكون الراء والباء) هي من سلالة الأغنام ذات الإلية وصوفها من نوع صوف السجاد ، وتنتشر في السعودية ، والدول المجاورة.

منشأها يعتقد أنه محلي ، ومن المرجح ان تكون ذات أصل مشترك مع العرب من العراق والعرب من الكويت.
صفاتها الشكلية :

جميع الجسم اسود او بني داكن ، وفي حالات قليلة تكون الأغنام مبرقشة باللون الأبيض
وتوجد القرون في الكباش ( الذكور ) وتكون غالبة قوية وملتوية الى الخلف بينما الإناث تكون عديمة القرون.
يغطي الصوف جميع الجسم فما فيها الراس والرقبة والأرجل حتى العرقوب.
متوسط وزن المولود 2.5 كجم ، عند توفر الأغذية الجيدة.
تستطيع الأغنام العرب التكاثر طوال أيام السنة وتصل اللإناث إلى النضج الجنسي في عمر سبعة أشهر ويصل عمر النعاج عند أول ولادة الى 18 – 24 شهر.